martes, 1 de julio de 2008

perfil lipidico

UNIVERSIDAD DE ORIENTE
NÚCLEO BOLÍVAR
ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD
“Dr. Francisco Battistini Casalta”
Departamento de Bioanálisis
Bioquímica Clínica




PERFIL LIPIDICO







bachiller: perez leidys
profesor: german guzman



CIUDAD BOLÍVAR, JUNIO 2008
INTRODUCCION

Los lípidos tienen la propiedad de ser relativamente insolubles en agua, y solubles en solventes no polares como el éter, cloroformo y benceno.

Los lípidos son constituyentes importantes de la alimentación no solo por su elevado valor energético, sino también por las vitaminas liposolubles y los ácidos grasos esenciales contenido en las grasas de los alimentos naturales.

Las lipoproteínas son constituyentes celulares que se encuentran en las membranas celulares y en las mitocondrias y sirven como medio de transporte de los lípidos en la sangre.


El perfil lipidito comprende en:

1- lípidos totales
2- triglicéridos
3- colesterol
4- fosfolipidos
5- electroforesis de proteínas.


CONTENIDO

Las lipoproteínas plasmáticas tienden a aumentar como resultado de:

a- una sobreproducción
b- reducida utilización o hidrólisis
c- deficientes catabolismo de los mismos

También pueden verse alteradas por:

a-variación fisiológica: como la edad y peso.
La edad tiende a elevar o disminuir los valores de fosfolipidos y colesterol
El peso tiende a elevar los valores de fosfolipidos y colesterol

b- variaciones patológicas: dislipoproteinemia
Primaria:
Tipo I: aumento de quilomicrones
Tipo: aumento de LDL
Tipo II b: aumento del LDL Y VLDL
Tipo III: Beta ancha
Tipo IV: aumento del VLDL
Tipo V: aumento del quilomicrones y VLDL
Secundaria:
Hipotiroidismo: aumento del colesterol
Diabetes sacarina: aumento de los triglicéridos
Síndrome nefrotico: aumento de los lípidos totales


COLESTEROL

El colesterol es transportado como lipoproteínas, encontrándose la porción mas alta en la B- LIPOPROTEINAS (LDL) que se forman a partir de las PRE- B LIPOPROTEINAS (VLDL) y una pequeña proporción en las ά-LIPOPROTEINAS (HDL).

Su concentración se ve alterada por:
Edad, factores geneticos, sexo, dieta, actividad física y hormonas.

Se observa hipercolesterolemia en:
Condiciones fisiológicas: embarazo
Condiciones patológicas: ictericia obstructiva, colestasia, síndrome nefrotico y pancreatitis aguda.

Se observa hipocolesterolemia en:
Condiciones fisiológicas: desnutrición
Condiciones patológicas: insuficiencia hepática grave, hipertiroidismo y procesos infecciosos agudos.

TRIGLICERIDOS

Los triglicéridos son esteres de glicerol, compuesto por tres ácidos grasos distintos. Su función es proporcionar ácidos grasos libres para que la sangre los reparta a los diferentes tejidos.

Hipertrigliceridemia:

Primaria: se registra en hiperlipemias familiares.
Secundaria: se observa en la obesidad, diabetes sacarina, pancreatitis aguda y crónica y síndrome nefrotico.


CONDICIONES QUE DEBE REUNIR LA MUESTRA PARA REALIZAR UN PERFIL LIPIDICO.

1- PREPARACION DEL PACIENTE:

a- no se debe variar los hábitos alimenticios durantes 3 días.
b- tener un peso corporal estable
c-ayuno de 12 a 16 horas
d- no consumir alcohol 72 horas antes del día de la toma de muestra.



2-TECNICA DE EXTRACCION DE SANGRE:

Un método conveniente consiste en tener al paciente sentado, sujeto a un mínimo de tensiones y extraer la muestra de la vena ante cubital. Si se emplea torniquete se aconseja retirarlo antes de la extracción ya que se ha informado de que el uso prolongado produce aumento en los valores lipiditos.


3-ELECCION DEL PLASMA O SUERO:

Para el análisis químico de lípidos y lipoproteínas se prefiere generalmente plasma. El anticoagulante aconsejado es EDTA sólido (1 mg/ml de sangre) y las células sanguíneas deben separase tan pronto como sea posible.


4- CONSERVACION DE LAS MUESTRAS:
Si no se va a realizar rapadamente las determinaciones de lípidos se recomienda la congelación de las muestras las muestras se han de analizar en unos pocos días es suficiente su refrigeración a 4 c. si la conservación no es a corto plazo las muestras deben ser congeladas.


Determinación de triglicéridos

Fundamento.:
1- el glicerol y los ácidos grasos se forman en una primera etapa por la acción de la lipasa sobre los triglicéridos.
2- El glicerol de fosforila por la adenosin-5-trifosfato(ATP) para producir glicerol-3-fosfato(G-3-P) y adenosin 5-difosfato(ATP) para producir glicerol- 3-fosfato (G-3-P) y adenosin 5- difosfato (ADP) en una reacción catalizada por el glicerol- Kinasa.
3- La G-3-P por la glicerol fosfato oxidasaproduciendo (DPA) y peroxido de hidrogeno.
4- Los peróxidos reaccionan con 4-aminoantipirina y 4-clorofenol bajo la influencia catalítica de la peroxidasa para formar quinoneimina.

Técnica

Preparar:
Blanco reactivo :1ml de reactivo
Estándar :0.01 de estandar+1ml de reactivo
Muestra: 0.01 de muestra+ 1 ml de reactivo

Incubar los tubos por 5 minutos a 37 c

Lea el estándar y muestra contra el blanco reactivo a 500 nm antes de los 15 min.


RESULTADOS:
Estándar: 200mg/dl
Muestra: 38 mg/dl


Determinación de colesterol total



Fundamento:

La determinación de Colesterol Total está basada en el procedimiento enzimático descrito por Allain, donde el colesterol--estearasa (CE) hidroliza los ésteres de colésterol a colesterol libre y ácidos grasoso. En presencia de oxigeno, el colesterol libre es oxidado por la colesterol oxidasa (CO) a cholest-4-en-3-one y peróxido de hidrogeno. Cuando el fenol está oxidativamente acoplado con 4-aminoantipirina en la presencia de peroxidasa (HPO), y peróxido de hidrogeno se produce un cromoforo de quinoneimina. La intensidad de color producido es proporcional a la concentración de colesterol y se mide coiorimetricamente a 500nm .


Tecnica

Preparar


Muestra : 1ml de reactivo+0.010 de muestra

Estándar: 1ml de reactivo +0.010 de estandar

Blanco reactivo: 1ml de reactivo


Incubar todos los tubos a 37 c por 5 min. o por 15 min. A temperatura ambiente.
Después de incubar mezcle todos los tubos por inversión. Lea los 30 min. siguientes.
Coloque el espectrofotómetro a 500 nm. Llévelo a o con el blanco reactivo.

RESULTADOS:

MUESTRA: 42 mg/dl.

Determinación de HDL-COLESTEROL

FUNDAMENTO

La separación del HDL-colesterol, está basada en la selectividad de los iones fosfotungstico y magnesio para precipitar todas las Lipoproteínas con excepción del HDL-colesterol. . Después de la centrifugación, el HDL-colesterol contenido en el líquido sobrenadante, se determina con el mismo método que se determinó el colesterol total.


Técnica

Preparar


Muestra 1ml de reactivo+ 0.05 de muestra

Estándar 1ml de reactivo+ 0.05 de estandar

Blanco reactivo :1ml reactivo

NOTA: Las 50 landas de muestra se obtienen de la siguiente manera:

1-tomar 500 landas de suero y mezclarlo con 50 landas de reactivo precipitante, y luego meterlo a la nevera por 15 min. Y luego centrifugarlo a 3200rpm por 10 min.
2- después del centrifugado se saca la 50 landa para realizar la determinación.
3-Incubar todos los tubos a 37 c por 5 min. o por 15 min. A temperatura ambiente.
4-Después de incubar mezcle todos los tubos por inversión. Lea los 30 min. Siguientes.
5-Coloque el espectrofotómetro a 500 nm. Llévelo a o con el blanco reactivo.

RESULTADOS:

MUESTRA: 4 mg/dl.

CT: HDL+LDL+VLDL
VLDL :TRIGLICERIDOS/5:38mg/dl/5: 8 mg/dl
LDL: CT-HDL-VLDL: 42mg/dl-4mg/dl-8mg/dl: 30mg/dl
HDL: CT-LDL-VLDL: 42mg/dl-30mg/dl-8mg/dl: 4 mg/dl .
CT:42+30+8(mg/dl):42 mg/dl



PACIENTE : GRUBER ROSANGEL.
RESULTADOS
COLESTEROL TOTAL 42mg/dl

LDL 30 mg/dl
HDL 4 mg/dl

VLDL 8mg/dl

TRIGLICERIDOS 38mg/dl

VALORES DE REFERENCIAS

COLESTERL TOTAL menos de 200 mg/dl
LDL de 0 a 130 mg/dl
HDL 35 a 85 mg/dl
VLDL 25 a 125 mg/dl
TRIGLICERIDOS 30 a 150 mg/dl

conclusion

La determinación de un perfil lipidico tiene gran importancia clínica ya que se puede emplear como un diagnostico primario de ciertas enfermedades, así como también en el seguimiento de algunas enfermedades como: diabetes mellitas, necrosis, obstrucción biliar y varias anormalidades metabólicas que resultan de disturbios endocrinos.



BIBLIOGRAFIA

Ángel, G. Ángel, M. Interpretación Clínica del Laboratorio. Transaminasas. Bogotá – Colombia. 2006.

Jiménez, E y otros. (1996) mejoría continúa de la calidad. Panamericana: México, D.F


curva a la tolerancia a la glucosa oral


UNIVERSIDAD DE ORIENTE
NÚCLEO BOLÍVAR
ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD
“Dr. Francisco Battistini Casalta”
Departamento de Bioanálisis
Bioquímica Clínica





CURVA A LA TOLERANCIA A LA GLUCOSA ORAL









bachiller: perez leidys
Profesor:German guzmán



CIUDAD BOLÍVAR, JUNIO 2008
INTRODUCCION

El páncreas es una glándula de secreción tanto endocrina como exocrina. La función endocrina consiste en la producción de hormonas importantes como la insulina y el glucagon.

La prueba de la tolerancia a la glucosa suministrada por vía oral mide el balance entre la velocidad del pasaje de la glucosa al flujo extracelular y su separación por la asimilación celular y al excreción urinaria si la hubiere.

CONTENIDO

La prueba de tolerancia a la glucosa por vía oral evalúa la capacidad que tiene el paciente para tolerar una carga de glucosa oral estándar, obteniendo espécimen de sangre y orina para determinar los niveles de azúcar antes de la sobrecarga y después de 1, 2,3 horas y a veces 4 o 5 horas de la sobrecarga

Factores que modifican la prueba:
- Estrés, ansiedad (el paciente debe venir psicológicamente preparado).
- El paciente de evitar el ejercicio o reposo excesivo.
- El ayuno no debe ser ni mayor ni menor al tiempo establecido.
- Enfermedades del paciente: hepáticas, hormonales, intestinales.
- Edad, ya que por encima de los 50 años la tolerancia a la glucosa disminuye a razón de 10 a 15 mg/dl por cada anciano.
- Cigarrillos, fármacos.


Condiciones para realizar la prueba:
-Dieta de tres días antes de la prueba.
- Suspender tres días antes de la prueba, cualquier tratamiento a bases de drogas que afecten l a prueba.
-El paciente debe estar en ayuno de 10 a 12 horas antes de la prueba.
-El paciente debe descansar antes de los de iniciar la prueba (30 min).
- Esta prueba es ambulatoria y no debe realizarse si el paciente se encuentra hospitalizado, con una enfermedad grave, o que altere el metabolismo de la glucosa.-



Procedimientos para la toma de la muestra:
-Verificar las condiciones del paciente
- Extraer muestra de sangre en ayuno
- Tomar la solución glucosada (vía oral) 75gramos.la ingesta debe hacerse en un periodo no máximo de 5 minutos.
- Extraer muestra de sangre a las 1,2 y 3 horas después de la ingesta .si se sospecha de hipoglucemia reactiva se deben extraer muestras a las 4 y 5 horas.


Fundamento

La glucosa es oxidada enzimáticamente por la glucosa oxidasa produciendo acido glucoronico y agua oxigenada. Esta última oxida al cromógeno en presencia de peroxidasa produciendo un compuesto de color rosado y cuya intensidad es proporcional a la concentración de glucosa en la muestra analizada.

Materiales y métodos:

Espectrofotómetro
Micro pipetas y pipetas
Tubos de ensayos
Baño de maría
Putillas, gradillas.

Técnica:

Blanco muestra patrón

Muestra - 10 landas -

Patrón - - 10 landas

reactivo 1ml 1ml 1ml


Se incuba por 10 minutos a 35c.

Valores de referencias de la glucemia: 70-100mg/dl
Valores de referencias

ADA

TIEMPO PTGO 75mg

Basal 95mg/dl
1 horas 180 mg/dl
2 horas 155mg/dl.

El aparato que se encuentra en el laboratorio de Bioquímica clínica es semiautomático y nos dio los resultados, sin tener que hacer nosotros los de factor de calibración.

Paciente: gruber rosangel.
Horas de toma de muestra resultados
Basal: 8:35 am 134 mg/dl
1 hora: 9:37 am 119mg/dl
2 horas: 10:36 am 119mg/dl



Conclusión

Valores mayores de 140 mg/dl en las 3 horas se considera que existe deterioro en la tolerancia a la glucosa y es un grupo que esta en mayor riesgo de desarrollar diabetes.




BIBLIOGRAFIA

Ángel, G. Ángel, M. Interpretación Clínica del Laboratorio. Transaminasas. Bogotá – Colombia. 2006.



infarto agudo de miocardio

UNIVERSIDAD DE ORIENTE
NÚCLEO BOLÍVAR
ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD
“Dr. Francisco Battistini Casalta”
Departamento de Bioanálisis
Bioquímica Clínica




PERFIL ENZIMATICO PARA LA VALORACION
DEL INFARTO AGUDO DE
MIOCARDIO










Bachiller:perez leidys
Profesor: German guzmán



CIUDAD BOLÍVAR, JUNIO 2008
INTRODUCCION


El sistema de conducción rítmica del corazón es muy susceptible a las lesiones por enfermedades cardiacas lo que tiene como consecuencia la disminución de la eficacia del corazón como bomba.

Existen varias enzimas cardiacas que son de gran importancia clínica debido a que la detección de su liberación en el torrente sanguíneo proporcionan un indicio sensible y especifico de lesión y muerte de la célula miocardica. Cuando muere la célula cardiaca se libera gran cantidad de estas enzimas y sus niveles pueden ser determinados en sangre.




CONTENIDO

Las enzimas para que sean de importancia clínica deben ser solubles y persistir en circulación un tiempo suficientemente largo como para poder ser detectadas.

Dentro de las enzimas tenemos:

1. Creatin fosfoqinasa(CPK)

Reacción: CK
Creatina+ATP---------------creatin-fosfato+ADP

Los valores de esta enzima están elevados en:

Pacientes con infarto de miocardio
Distrofia muscular progresiva
Miopatías alcohólicas
Infarto pulmonar

La CPK se eleva a las 6-8 horas después del infarto, alcanza su pico máximo a las 24 horas y retorna a su nivel normal a los 3-4 días.


2. CPK-MB (isoenzima banda miocardica)

Se eleva en:
Paciente con infarto agudo de miocardio
Pacientes con insuficiencias coronarias graves

La CPK-MB se eleva a la 4-8 horas, alcanza su pico máximo a la 12-24 horas y retorna a su nivel normal después de las 72 horas.


3. Lactato deshidrogenasa(LDH)

Reacción:
LDH
l-lactato+NAD+----------------------piruvato+NADH+H

Se eleva en:
Infarto del miocardio
Daño renal
Hepatitis
Enfermedades musculares

Esta enzima comienza a aumentara las 12-24 horas después del infarto, alcanzando su pico máximo entre las 48-72 horas y vuelve a su nivel normal después de decimo día.


Determinación de CK-MB

Fundamento:

El método se basa en la inhibición específica de las subunidades de CK-MB con anticuerpos monoclonales anti CK-MB.
Los anticuerpos inhiben tanto la isoenzima MM como las subunidades M correspondientes a CK-MB. Las subunidades B se determinan mediante el empleo de un sistema reactivo basado en una técnica analítica optimizada por la IFCC, con N – acetilcisteina como activador. Adicionado de anticuerpos monoclonales con anti- CK-MB.

Materiales y métodos:

Espectrofotómetro
Micro pipetas y pipetas
Tubos de ensayos
Sustrato reconstituido


Técnica:

Sustrato reconstituido: 1,25 de buffer a un vial de sustrato.
Reincubar unos minutos. Luego agregar agregar: 50 landas de muestra del paciente y se mescla por inmersión.
Esperar 10 minutos .ajustar la absorvancia a un valor de referencia y disparar simultáneamente el cronometro, registrar las absorvancia cada minuto durante 5 minuto.
Determinar la diferencia promedio de abs/min a cada lectura anterior y promediando.
El aparato que se encuentra en el laboratorio de Bioquímica clínica es semiautomático y nos dio los resultados, sin tener que hacer nosotros los cálculos como sacar la media absorbancia ni delta A. nuestro resultado fue: 66.07UI/L.

DETERMINACION DE CK-MB

PACIENTE: fani Rodríguez
EDAD: 23 años
RESULTADOS: 66.07 UI/L
VALOR DE REFERENCIA: 24-170 UI/L a 37 c.



Conclusión
La determinación de CK-MB en esta paciente se encuentran dentro de los valores de referencias de acuerdo al método utilizado .el quit comercial empleado es de laboratorios Wiener.




BIBLIOGRAFIA

Ángel, G. Ángel, M. Interpretación Clínica del Laboratorio. Transaminasas. Bogota – Colombia. 2006


analisis general de orina



UNIVERSIDAD DE ORIENTE
NÚCLEO BOLÍVAR
ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD
“Dr. Francisco Battistini Casalta”
Departamento de Bioanálisis
Bioquímica Clínica





EXAMEN GENERAL DE ORINA









Bachiller: perez leidys
Profesor: German guzmán



CIUDAD BOLÍVAR, JUNIO 2008

INTRODUCCION

La función principal del riñón consiste en regular el medio interno del organismo para mantenerlo en un estado constante de equilibrio.

El riñón interviene como regulador de todas las sustancias de los líquidos orgánicos y es fundamentalmente, responsable del mantenimiento de la homeóstasis hidroeléctrica.

El análisis de orina es unas de las pruebas mas sencillas y útiles en la practica clínica, generalmente descubre la enfermedad renal cuando esta existe y dirige muchas veces al medico hacia un diagnostico especifico.


CONTENIDO
El análisis de orina habitual consta de las siguientes partes:

EXAMEN FISICO: es la parte inicial de un análisis de orina y comprende la evaluación de color, aspecto, densidad, ph y reacción.

EXAMENQUIMICO: se utilizan pruebas cualitativas con tiras reactivas para determinar nitritos, proteínas, glucosa, cuerpos cetónicos, urobilinogeno, bilirrubina y sangre.

EXAMEN MICROSCOPICO: comprende en el análisis del sedimento urinario, Este estudio puede revelar la presencia de cristales, eritrocitos, leucocitos, bacterias, cilindros, células epiteliales, hongos, espermatozoides, parásitos, mucina, y artefactos como fibras de ropas.

Nombre del paciente: yuri caraballo
Edad: 25 años

1-ASPECTO: claro
2-COLOR: amarillo
3-DENSIDAD: 1030
4-PH: 5



EXAMEN QUIMICO:

TECNICA: EMPLEO DE TIRAS REACTIVAS.

1-bilirribina: -
2-urobilinogeno: -
3-glucosa: -
4- proteinas: -
5-sangre: -
6- nitritos: -
7-ph: 5
8-densidad: 1030
9-leucocitos: +


ESTUDIO DEL SEDIMENTO:
TECNICA:
1- la muestra de orina debe examinarse de inmediato, ya que las células y cilindros comienzan a desintegrarse en el termino de 1 a 3 horas.
2- Mezclar bien la orina
3- Colocar 10ml de orina en el tubo de centrifuga graduado
4- Centrifugar a 1800 rpm
5- Descartar el sobrenadante dejando solo el sedimento
6- Colocar una gota del sedimento en una lámina porta objeto y cubrirla con una lamina cubre objeto evitando la formación de burbujas.
7- Observar al microscopio.

RESULTADOS
Oxalato de calcio: escasos x campo de 40X

Urato amorfo: escasos x campo de 40X


Bacterias: moderadas x campo de 40X
Leucocitos: 2 x campo de 40X


BIBLIOGRAFIA

Jiménez, E y otros. (1996) mejoría continúa de la calidad. Panamericana: México, D.F















lunes, 16 de junio de 2008

analisis de semen


UNIVERSIDAD DE ORIENTE
NÚCLEO BOLÍVAR
ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD
“Dr. Francisco Battistini Casalta”
Departamento de Bioanálisis
Bioquímica Clínica




Analisis Del semen











Bachiller:
perez leidys
profesor:

German guzmán





CIUDAD BOLÍVAR, JUNIO 2008

INTRODUUCION


El estudio del líquido seminal, desde el punto de vista bioquímico, es una determinación analítico-clínica de gran importancia en los estudios de infertilidad en el hombre.

Un análisis seminal completo nos informa sobre las propiedades del semen, tanto de la producción de espermatozoides como de la función de las glándulas sexuales accesorias.

Para llegar a conclusiones se recomienda realizar al menos dos análisis seminales, con no menos de quince días ni más de noventa días de separación entre ambas. Si los resultados de los dos análisis son diferentes debe repetirse un tercer examen antes de hacer conclusiones.


Los estudios que se realizan al semen con el propósito de diagnosticar la presencia de algún problema de fertilidad son los siguientes:

v Espermatograma
v Espermocultivo
v Recuperación de espermatozoides motiles
v Prueba de la viabilidad
v Prueba de la integridad del acrosoma
v Determinación de anticuerpos antiespermaticos


CONTENIDO

Condiciones que debe tener el paciente para la realización de un esperrmograma son las siguientes:

Tener de 3 a 5 días de abstinencia sexual :
Ideal: 3 dias
Minimo.2 dias
Maximo: 6 dias
Tener de 3 a 5 dias de abtinencia alcoholica
No tener fiebre, gripe, ni ningún proceso viral o bacteriano.
Tomar la muestra por masturbación en un colector estéril.
Entregar la muestra en el laboratorio en un periodo no mayor a 1 hora de haber sido tomada la muestra.
Antes de tomar la muestra debe lavarse y secarse los genitales y las manos.
Si la muestra es solo para esperrmograma, el paciente debe orinar completamente.
Manejar la muestra con precaución, recordando que se puede transmitir a partir de ella, el VIH .HEPATITIS B. VIRUS HERPES.

El semen se considera que es normal cuando tiene:

Más de 20 millones de espermatozoides en un centímetro cúbico.
Mas de 50 % de espermatozoides móviles y por lo menos 30% de traslativos rápidos.
Mas de 30% de espermatozoides con forma y tamaño normal.

El semen se considera anormal cuando tiene:

Ausencia de espermatozoides: Azoospermia
Disminución del número de espermatozoides: Oligozoospermia
Disminución de la movilidad: Astenozoospermia
Alteración de la morfología: Teratozoospermia
Alteración de los tres parámetros: Oligoastenoteratozoospermia

Valores de referencia según la OMS:
pH:……………………………………………... .7,2 a 7,8
Volumen………………………………………... 2 ml o mas
Concentracion de espermatozoides..................... 20x106 espermatozoides/ml o mas
Total de eyaculado................................................ 40x106 espermatozoides/ml o mas
Motilidad............................................................... 50% o mas con progresion lineal (categoria a+b) o 25% o mas con progresion lineal rapida ( categoria a )
Morfologia..............................................................30% o mas con morfologia normal.
Viabilidad...............................................................75% vivos o mas ( no se colorean )
Leucocitos...............................................................menos de 1x106/ ml
Zinc..........................................................................2,4 μmol o mas por eyaculado
ά – glucosidasa neutral..........................................2,0 mU o mas por eyaculado
Acido citrico total......................................................52 μmol o mas por eyaculado
Fosfatasas acidas total................................................200 mU o mas por eyaculado
Fuctosa total...............................................................13 μmol o mas por eyaculado

Hora de toma de muestra: 9:55 am
Nombre del paciente: anónimo.

EXAMEN MACROSCOPICO

v ASPECTO: homogeneo
v LICUEFACCION: liquido a los 25 min.
v VOLUMEN: 5 ml
v COLOR: blanco amarillento
v pH : 8
v CONSISTENCIA: más de 2 cm.








EXAMEN MICROSCOPICO

v MOTILIDAD

TECNICA: se agrega una pequeña cantidad de semen (menos de 10 μL) en un portaobjeto y se procede a cubrirlo con un cubreobjeto, luego se deja estabilizar la muestra por 1 min. Antes de ser estudiada.


a-motilidad progresiva rápida………….27%
b- motilidad progresiva lenta…………..15%
c- motilidad no progresiva…………….48%
d- inmóvil………………………………20%

Resultado: de acuerdo a los valores de referencia de la OMS son de tipo A

v RECUENTO DE LOS ESPERMATOZOIDES

TECNICA: se preparo una dilución 1/10, es decir, 1 ml de muestra y 9 ml de la solución diluyente. Luego con la muestra diluida se lleno el hematimetro y se dejo reposar por 5 min. Luego se contaron los espermatozoides completos con el objetivo de 100x.
El recuento se realizo en el cuadrado central del hematimetro, se contaron los cuadrados centrales y determinamos el promedio.

Promedio del recuento de espermatozoides: 124

Promedio del recuento de espermatozoides
Concentración de espermatozoides: -----------------------------------------------------------

Factor de corrección

NOTA: el factor corrección va a depender de la dilución realizada a la muestra y del número de cuadrados grandes del cuadrante central del hematimetro que fueron contados.

Factor de corrección: 10
124
Concertación de espermatozoides: ------------------:12,4x106 espermatozoides/ ml

10


Total del eyaculado: concentración de espermatozoide x Vol. total de la eyaculacion (ml)


Total del eyaculado: 12,4x106espermatozoidesx 5 ml: 62x106espermatozoides/ml.

v MORFOLOGIA


TECNICA: se utilizan en su mayoría extendidos teñidos con diferentes métodos. Dentro de ellos tenemos Giemsa, la técnica de Papanicolaou modificada, la tinción de Bryan-leishman o la tinción de shorr.



RESULTADOS: 50 % con morfología normal.


v VIABILIDAD:

TECNICA: TINCION CON EOSINA:
1. Mézclese una gota de semen fresco con una gota de solución de eosina al 5% en un portaobjeto y cúbrase con el cubreobjeto.

2. Al cabo de 1 o 2 minutos obsérvese el preparado con 40x con luz intensa o con contraste de fase.

3. Cuéntense los espermatozoides vivos y muertos.


RESULTADOS: 90 % vivos



BIBLIOGRAFIA

Ángel, G. Ángel, M. Interpretación Clínica del Laboratorio. Transaminasas. Bogota – Colombia. 2006

lunes, 9 de junio de 2008

evaluacion de la funcion osea



UNIVERSIDAD DE ORIENTE
NÚCLEO BOLÍVAR
ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD
“Dr. Francisco Battistini Casalta”
Departamento de Bioanálisis
Bioquímica Clínica




Evaluación de la función ósea




Facilitador: Bachiller:
Lcdo. Germán guzmán Pérez leidys
Gonzales Nairobis






CIUDAD BOLÍVAR, MAYO 2008


introduccion



El hueso es un órgano firme, duro y resistente que forma parte de los vertebrados. Esta compuesto por una matriz ósea que contiene colágeno I y proteínas, una matriz mineral que contiene calcio y fosforo, y una matriz celular en donde podemos encontrar los osteoclasto y osteoblastos.


fósforo

Es un elemento esencial del hueso y de todos los tejidos e intervienen, de alguna forma, en casi todos los procesos metabólicos. la cantidad total del fosforo en un adulto normal es aproximadamente de 32mol(1 Kg), del cual el 85% se localiza en el hueso y el 15% en el plasma.

Fundamento

Los iones de fosfato reaccionan con el molibdeno en un medio acido, formando un complejo amarillo, que por acción de un tapóm alcalino, es reducido a azul de molibdeno que es medido colorimétricamente

Material requerido:

Espectrofotómetro
Micropipetas y pipetas para medir los volúmenes indicados
Cronometro

Técnica

Paciente: 1 ml de reactivo + 20 landas de muestra

Patrón: 1 ml de reactivo + 20 landas de muestra

Blanco: 1 ml de reactivo.

1- Mesclar bien.
2- Incubar 5 min a temperatura ambiente
3- Leer a 340 nm.

El aparato que se encuentra en el laboratorio de Bioquímica clínica es semiautomático y nos dio los resultados directamente en mg/dl.

Lectura en mg/dl: 6.30

VR: 2,5-4,8 mg/dl.

Bibliografía


Ángel, G. Ángel, M. Interpretación Clínica del Laboratorio. Transaminasas. Bogota – Colombia. 2006
Anderson , S .y cockaine, S.(1995).QUIMICA CLINICA .interamericana McGraw-hill:mexico

martes, 3 de junio de 2008


Universidad de Oriente
Núcleo Bolívar
Escuela de Ciencias de la Salud “Francisco Battistini Casalta”
Cátedra: Bioquímica Clínica.






perfil hepatico










Profesor:
Germán Guzmán

Alumnas:
González Nairobys
Pérez Leidy








Ciudad Bolívar, 26 de Mayo del 2008




INDICE
Pag.
INTRODUCCIÓN 3

CONTENIDO 4

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS 7




INTRODUCCION

Las Transaminasas son enzimas representadas por proteínas simples, conjugadas y sintetizadas por células de diferentes tejidos: hepático, renal, nervioso, miocardio y músculo estriado. Las cantidades de estas enzimas que pasan a la sangre son tan pequeñas que no permiten la evaluación cuantitativa en miligramos o en mili equivalentes, por lo que se presentan en unidades internacionales (IU). (1)

El resultado de la acción de las enzimas sobre substratos especiales genera como producto, aminoácidos como alanina, glutamato o aspartato, originando dos transaminasas de gran importancia en el Laboratorio, como son la Glutámico-oxalacetica(SGOT) también llamada aspartato aminotransferasa (AST) y la glutámico piruvicotransaminasa (SGPT) o alanino aminotranferasa (ALT). En el suero abunda más AST que la ALT. (1)

En el hepatocito la ALT se encuentra solo en el citoplasma y la AST se encuentra tanto en citoplasma como en las mitocondrias, los que les origina gran diferencia en especificidad e intensidad de reacción a los procesos patológicos. (1)

La ALT se identifica en todo proceso inflamatorio necrotico del hígado y es muy empleada prueba determinadota en personas que donan sangre, para descartar Hepatitis viral activa. Es una enzima citoplasmática del hepatocito, que se libera fácilmente cuando existe alteración celular, se manifiesta con ictericia y se puede elevar muy poco en el infarto al miocardio e intensamente si predomina la éxtasis hepática por insuficiencia cardiaca. (1)

La AST Es una enzima que se encuentra tanto en el citoplasma del hepatocito como en las mitocondrias por lo que es binocular. Esta presente en la epidermis de la piel, miocardio, músculo estriado, páncreas y riñón. Los Glóbulos rojos contienen unas 10 veces más AST que el suero. Agentes como el etanol que inducen la necrosis de las mitocondrias celulares, liberan la AST lo mismo que la hepatitis viral. Es muy útil para medir la actividad hepática y cronicidad de hepatitis viral, se eleva en infarto al miocardio, al igual que en la mononucleosis, obstrucción biliar, cirrosis, metástasis hepática, pancreatitis aguda, anemia hemolítica e infección renal. (1)



CONTENIDO

Determinación de ALT o GPT.

Fundamento del método

Basado en el siguiente esquema reaccionante:

L- alanina + 2-oxoglutarato GPT piruvato + L- glutamato

Piruvato + NADH + H* LDH L- lactato + NAD*

Reactivos provistos

Buffer: solución buffer TRIS pH 7.5 (30ºC) conteniendo L – alanina
Sustrato: viales conteniendo 2-oxoglutarato, nicotamida adenina dinucleotido (NADH) y lactato deshidrogenasa (LDH).

Instrucciones para su uso:
El buffer esta listo para usar
El sustrato: agregar 2 ml de buffer a un frasco de sustrato. Tapar, agitar hasta disolución completa y fechar.
La muestra debe ser tomada de forma usual

Material requerido:

Espectrofotómetro, Fc 1740
Micropipetas y pipetas para medir los volúmenes indicados
Baño de agua a la temperatura indicada en el procedimiento a seguir
Cronometro

Procedimiento:

Microtécnica

En una cubeta mantenida a 37 ºC, colocar:

Sustrato reconstituido 1 ml
Muestra 100 ul

Mezclar inmediatamente y dispara inmediatamente el cronometro y leer al minuto luego 2, 3 y 4 min.

El aparato que se encuentra en el laboratorio de Bioquímica clínica es semiautomático y nos dio los resultados, sin tener que hacer nosotros los cálculos como sacar la media absorbancia ni delta A. nuestro resultado fue: 6.21 UI/L ( 37°c)
Los Valores de referencia son:
En hombres: de 0 – 49 UI/L
En mujeres: de 0 – 31 UI/L


Determinación de AST o GOT.

Fundamento del método

Basado en el siguiente esquema reaccionante:

L- aspartato + 2-oxoglutarato GOT oxalacetato + L- glutamato

Oxalacetato + NADH + H* MDH L- malato + NAD*

Reactivos provistos

Buffer: solución buffer TRIS pH 7.8 (30ºC) conteniendo L – aspartato
Sustrato: viales conteniendo 2-oxoglutarato, nicotamida adenina dinucleotido (NADH) y malato deshidrogenasa (MDH) y lactato deshidrogenasa (LDH).

Instrucciones para su uso:
El buffer esta listo para usar
El sustrato: agregar 2 ml de buffer a un frasco de sustrato. Tapar, agitar hasta disolución completa y fechar.
La muestra debe ser tomada de forma usual

Material requerido:

Espectrofotómetro, Fc 1740
Micropipetas y pipetas para medir los volúmenes indicados
Baño de agua a la temperatura indicada en el procedimiento a seguir
Cronometro

Procedimiento:

Microtécnica

En una cubeta mantenida a 37 ºC, colocar:

Sustrato reconstituido 1 ml
Muestra 100 ul

Mezclar inmediatamente y dispara inmediatamente el cronometro y leer al minuto luego 2, 3 y 4 min.

El aparato que se encuentra en el laboratorio de Bioquímica clínica es semiautomático y nos dio los resultados, sin tener que hacer nosotros los cálculos como sacar la media absorbancia ni delta A. nuestro resultado fue: 19.76UI/L ( 37°c)

Los Valores de referencia son:
En hombres: de 0 – 38 UI/L
En mujeres: de 0 – 31 UI/L


BIBLIOGRAFIA

Ángel, G. Ángel, M. Interpretación Clínica del Laboratorio. Transaminasas. Bogota – Colombia. 2006